南京中医药大学学报２０１２年７月第２８卷第４期 ３７４一 ｊ（１取Ｎ翘瞪ＮＡＮＪＩＮＧ￣ＩＴＹＯＦＴＣＭＶｄ．２８ｈｂ．４ｈｄ．２９１２ 龙葵药材的质量评价研究 张彦华，钱大玮，唐于平 ，段金廒 （南京中医药大学江苏省方剂高技术研究重点实验室，江苏南京２１００４６） 摘要：目的 建立龙葵药材的质量标准，并对市售龙葵药材进行质量分析与评价。方法 采用薄层色谱法对澳洲茄碱和澳洲 茄边碱进行定性鉴别；采用ＨＰＬＣ—ＥＬＳＤ法测定龙葵中上述２种生物碱的含量；采用《中华人民共和国药典》附录中相应测定 方法分析考察了水分、总灰分、酸不溶性灰分，浸出物含量。结果 １Ｏ批药材中澳洲茄碱和澳洲茄边碱含量范围分别为 ０．００５ ～０．０４８ ，０．００６ ～０．０５３ 、水分范围为７．２５ ～１１．２ 、总灰分范围为１Ｏ．１ ～１５．７ 、酸不溶性范围为 ０．４９９ ～２．ｏ８ 、浸出物范围为１４．１ ～２３．９ 。结论 所建立的龙葵药材中澳洲茄碱、澳洲茄边碱的薄层鉴别及ＨＰＬＣ— ＥＬＳＤ含量测定方法准确、重现性好，可用于该药材的质量控制。 关键词：龙葵药材；澳洲茄碱；澳洲茄边碱；ＴＬＣ；ＨＰＬＣ；ＥＬＳＤ 中图号：Ｒ２８２．７１ 文献标志码：Ａ 文章编号：１６７２—０４８２（２０１２）０４—０３７４—０４ Ｑｕａｌｉｔｙ Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｏｎ Ｈｅｒｂａ Ｓｏｌａｎｉ Ｎｉｇｒｉ ＺＨＡＮＧ Ｙａｎ—ｈｕａ，ＱＩＡＮ Ｄａ—ｗｅｉ，ＴＡＮＧ Ｙｕ—ｐｉｎｇ ，ＤＵＡＮ Ｊｉｎ—ａｏ （Ｊ ｉａｎｇｓｕ Ｋｅｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｆｏｒ Ｈｉｇｈ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ｏｆ ＴＣＭ Ｆｏｒｍｕｌａｅ，Ｎａｎｊｉｎｇ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ ＮａｎＪｉｎｇ，２１００４６，Ｃｈｉｎａ） ＡＢＳＴＲＡＣＴ：ＯＢＪＥＣＴＩＶＥ Ｔｏ ｅｓｔａｂｌｉｓｈ ｑｕａｌｉｔｙ ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｍｅｔｈｏｄｓ ａｎｄ ｓｔａｎｄａｒｄｉｚａｔｉｏｎ ｆｏｒ Ｓａｌａｎｕｍ ｎｉｇｒｕｍ Ｌ．，ａｎｄ ｔｏ ａｎａｌｙｚｅ ａｎｄ ｅｓｔｉｍａｔｅ ｔｈｅ ｑｕａｌｉｔｙ ｏｆ Ｓａｌａｎｕｍ ｎｉｇｒｕｍ Ｌ．ｓｏｌｄ ｉｎ ｍａｒｋｅｔｓ．ＭＥＴＨＯＤＳ ＴＬＣ ｗａｓ ｕｓｅｄ ｔｏ ｉｄｅｎｔｉｆｙ Ｓｏｌａｓｏｎｉｎｅ ａｎｄ Ｓｏ— ｌａｍａｒｇｉｎｅ．ｗｈｉｌｅ ＨＰＬＣ—ＥＬＳＤ ｍｅｔｈｏｄ ｗａｓ ｕｔｉｌｉｚｅｄ ｔＯ ｑｕａｎｔｉｆｙ ｔｈｅ ｔｗｏ ａｌｋａｌｏｉｄｓ ｉｎ Ｓａｌａｎｕｍ ｎｉｇｒｕｍ Ｌ．．Ａｎｄ ｔｈｅ ｃｏｎｔｅｎｔｓ ｏｆ ｉｔｓ ｍｏｉｓｔｕｒｅ，ｔｏｔａｌ ａｓｈ，ａｃｉｄ－ｉｎｓｏｌｕｂｌｅ ａｓｈ ａｎｄ ｅｘｔｒａｃｔｉｖｅ ｗｅｒｅ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ ｂｙ ｔｈｅ ｍｅｔｈｏｄ ｒｅｃｏｒｄｅｄ ｉｎ ｔｈｅ ａｐｐｅｎｄｉｘ ｏｆ Ｐｈａｒｍａ ｆ ｃｏｐｏｅｉａ ｏｆ Ｐｅｏｐｌｅ＇ｓ Ｒｅｐｕｂｌｉｃ ｏｆ Ｃｈｉｎａ．ＲＥＳＵＬＴＳ Ｉｎ １０ ｂａｔｃｈｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｈｅｒｂａｌ ｓａｍｐｌｅｓ，ｔｈｅ ｃｏｎｔｅｎｔ ｒａｎｇｅｓ ｏｆ Ｓｏｌａｓｏｎｉｎｅ ａｎｄ Ｓｏｌａｍａｒｇｉｎｅ ｗｅｒｅ ０．００５ ～Ｏ．０４８ ａｎｄ ０．００６％ｎ０．０５３ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ．Ｔｈａｔ ｏｆ ｍｏｉｓｔｕｒｅ ｉｎ ｔｈｅ ｈｅｒｂ ｗａｓ ７．２５ ～１１．２ ， ｔｈｅ ｔｏｔａｌ ａｓｈ １０．１ ～１５．７ ，ｔｈｅ ａｃｉｄ—ｉｎｓｏｌｕｂｌｅ ａｓｈ ０．４９９ ～２．０８ ，ａｎｄ ｔｈｅ ｅｘｔｒａｃｔｉｖｅ １４．１ ～２３．９ ．ｃ０ＮｃＬｕｓ１０Ｎ Ｔｈｅ ｍｅｔｈｏｄｓ ｏｆ ＴＬＣ ａｎｄ ＨＰＬＣ－ＥＬＳＤ ａｒｅ ａｃｃｕｒａｔｅ ａｎｄ ｏｆ ｇｏｏｄ ｒｅｐｒｏｄｕｃ ｉ１ｉｔｙ，ｗｈｉｃｈ ｃａｎ ｂｅ ｕｓｅｄ ｔｏ ｅｓｔａｂｌｉｓｈ ｔｈｅ ｑｕａｌｉｔｙ ｃｒｉ— ｔｅｒｉａ ｏｆ Ｓａｌａｎｕｍ ｎｉｇｒｕｍ Ｌ． ＫＥＹ Ｗ０ＲＤＳ：Ｓａｌａｎｕｍ ｎｉｇｒｕｍ Ｌ．；ｓｏｌａｓｏｎｉｎｅ；ｓｏｌａｍａｒｇｉｎｅ；ＴＬＣ；ＨＰＬＣ；ＥＬＳＤ 龙葵为茄科植物龙葵Ｓａｌａｎｕｍ ｎｉｇｒｕｍ Ｌ．的干 龙葵中澳洲茄碱和澳洲茄边碱薄层鉴别的报道，曾 燥地上部分。性寒，味苦、微甘，有小毒。分布于全 有文献 采用ＨＰＬＣ—ＤＡＤ法测定其有效成分澳洲 国各地，具有清解热毒，消肿散结，消炎利尿的功效， 茄碱和澳洲茄边碱的含量，由于澳洲茄碱和澳洲茄 用于疮疖肿痛，尿路感染，小便不利，肿瘤［】］。曾收 边碱只在紫外末端波长处有吸收，且含量较低，该分 载于《中华人民共和国药典））１９７７年版一部中，该版 析方法存在干扰大、基线不稳等缺点。本文建立了 药典中收载的龙葵标准仅有性状鉴别一项，对于龙 龙葵中２个生物碱的薄层鉴别方法并采用ＨＰＬＣ— 葵的其他指标未进行控制。近年来因其所含生物碱 ＥＬＳＤ方法进行含量测定，通过样品前处理方法的 的抗癌活性ｌ２ ］而日益成为研究的热点，并引起国内 优化，使含量较低的澳洲茄碱和澳洲茄边碱在确定 外学者的广泛关注。研究发现，澳洲茄碱和澳洲茄 的分析条件下，分离良好、基线平稳、待测成分无干 边碱是其主要抗癌活性成分 ］。目前笔者未见关于 扰。同时采用所建立的鉴别、含量测定方法及药典 收稿日期：２０１１一Ｏ５—０７：修稿日期：２０１１－０８—２５ 基金项目：国家药典委员￣（ＹＳ－１３５）；教育部“新世纪优秀人才支持计划”（ＮＣＥＴ一０９—０１６３）；江苏省高校优秀科技创新团［￣（２００９）；江苏高 校优势学科建设工程资助项目（ＹＳＸＫ一２０１０） 作者简介：张彦华（１９８２一），女，河北行唐人，南京中医药大学２００７级硕士研究生。＊通信作者：ｙｕｐｉｎｇｔａｎｇ＠ｎｊｕｔｃｍ．ｅｄｕ．ｃｎ 张彦华，等：龙葵药材的质量评价研究第４期 ３７５一 规定的水分、灰分、浸出物检查方法，对安徽、山东、 部位，再用７５ 乙醇１５０ ｍＬ洗脱，收集洗脱液，蒸 江西、河南、河北５省１Ｏ批龙葵药材进行了综合质 干，残渣加甲醇５ ｍＬ使溶解，溶液加于中性氧化铝 量分析与评价，为了解与控制市售龙葵药材的质量 柱（１００～１２０目，５ ｇ，内径ｉ５ ｍｍ，用甲醇湿法装 提供了科学依据。 ‘ 柱）上，用甲醇１５０ ｍＬ洗脱，弃去甲醇部位，再用 １ 材料 ８５ 甲醇１５０ ｍＬ洗脱，收集洗脱液，蒸干，残渣加 Ｗａｔｅｒｓ ２６９５高效液相色谱仪，Ｗａｔｅｒｓ ２４２４ 甲醇１ ｍＬ使溶解，作为供试品溶液。 ＥＬＳＤ检测器；ＢＴ一１２５Ｄ电子分析天平；硅胶Ｇ薄 ２．１．３鉴别结果 层板（青岛海洋化工厂分厂，０８０２１４，规格：２００ ｍｍ 照薄层色谱法（附录ⅥＢ）试验，吸取上述３种 ×２００ ｍｍ；厚度：０．２０～０．２５ ｍｍ，活度：三色分 溶液各３ Ｌ，分别点于同一硅胶Ｇ板上，以乙酸乙 开）；ＫＱ一２５０Ｅ型超声波清洗器（工作频率４０ ｋＨｚ）； 酯一甲醇一浓氨试液（２：９：１）为展开剂，展开，取出， ＥＰＥＤ超纯水系统（南京易普达易科技发展有限公 晾干，喷以改良碘化铋钾试液，晾干，日光下检视。 司）。 供试品色谱中，在与对照品色谱相应的位置上，显相 澳洲茄碱、澳洲茄边碱对照品由江苏中康药物 同颜色的斑点。采集的１０批次样品，按确定的 科技有限公司丁岗博士赠送，纯度大于９８ （ＨＰＬＣ ＴＬＣ方法进行分析，结果见图１。 归一化法分析）；乙腈（色谱纯，美国ＴＥＤＩＡ公司）； 甲醇（色谱纯，江苏汉邦科技有限公司）；三乙胺（分 析纯，国药集团化学试剂有限公司）；超纯水，实验室 自制。 １０批龙葵药材经南京中医药大学中药鉴定教 研室乐巍博士鉴定均为茄科植物龙葵Ｓａｌａｎｕｍ ｎｉ— ｇｒｕｍ Ｌ．的干燥地上部分，见表１。 表１ １０批不同产地的龙葵药材样品 Ｓｌ＿澳洲茄碱；Ｓ２．澳洲茄边碱；１～１０为１０批龙葵药材 图１ １０批龙葵药材薄层色谱图 ２．２常规项目检查 ２．２．１水分测定 照《中华人民共和国药典》２００５年版一部水分 测定法（附录ⅨＨ）测定表１样品，结果见表２。 ２．２．２ 总灰分及酸不溶性灰分测定 参照《中华人民共和国药典》２００５年版一部灰 分测定法（附录Ｉｘ Ｋ）测定表１样品，结果见表２。 ２．２．３浸出物测定 参照《中华人民共和国药典》２００５年版一部浸 ２方法与结果 出物测定（附录Ｘ Ａ）项下的热浸法测定１０批样品 ２．１薄层鉴别 的浸出物，以稀乙醇作溶剂，结果见表２。 ２．１．１对照品溶液制备 ２．３澳洲茄碱、澳洲茄边碱的含量测定 分别以甲醇配制１ ｍＬ含１ ｍｇ澳洲茄碱、澳洲 ２．３．１ 色谱条件 茄边碱的对照品溶液。 色谱柱：Ａｌｈｉｍａ Ｃ１８（４．６ １Ｔｉｍ×２５０ ｍｍ，５ ２．１．２供试品溶液制备 ｍ）；流动相：０．０２ 三乙胺乙腈一水（３８：６２）；流 取本品粉末１５ ｇ，加７５ 甲醇１５０ ｍＬ，加热回 速：１．０ ｍＬ／ｍｉｎ；ＥＬＳＤ条件：气体压力３０ ｐｓｉ，漂移 流１ ｈ，放冷，滤过，滤液蒸干，残渣加水１０ ｍＬ使溶 管温度７Ｏ℃，喷雾器温度３６℃。此条件下样品中 解，通过Ｄ１０１型大孔吸附树脂（１０ ｇ，５００ ｍｍ×２０ 的澳洲茄碱和澳洲茄边碱可以达到良好的分离，结 ｍｍ）柱，以３Ｏ 乙醇１５０ ｍＬ洗脱，弃去３Ｏ 乙醇 果见图２。 南京中医药大学学报２０１２年７月第２８鲞箜 塑 ０们 ０。８∞１０∞１２∞¨肿 ∞１ｅ ０ｏ ２０ ０。≈ ｏ０ ２０ｏ ４ ００ ｅ ０ｏ 。吣 １０ ０ｏ １２∞哪 １●ｏ０ １６ ｏ０ １日０ｏ∞瑚２２ＯＯ Ａ Ｂ Ａ．对照品；Ｂ．龙葵药材样品；１．澳洲茄碱；２．澳洲茄边碱 图２龙葵药材澳洲茄碱和澳洲茄边碱含量测定ＨＰＬＣ图谱 ２．３．２对照品溶液制备 次，每次５ Ｌ，计算其峰面积的ＲＳＤ值，澳洲茄碱 为４．２ ９／６，澳洲茄边碱为４．７ 。 ２．３．７重复性试验 精密称取澳洲茄碱、澳洲茄边碱对照品，甲醇溶 解，配制成每１ ｍＬ含澳洲茄碱０．３７６ ｍｇ、澳洲茄边 碱０．３５０ ｍｇ的对照品溶液。 取５号龙葵药材６份，按“２．３．３”项下确定的方 ２．３．３供试品溶液制备 取本品粉末约６ ｇ，精密称定，置具塞锥形瓶中， 精密加入７５ 甲醇１００ ｍＬ，称定质量，超声提取１ ｈ，再称定质量，用７５ 甲醇补足减失的质量，静置， 法制备供试品溶液，依法测定，样品中澳洲茄碱的平 均含量为０．０６８ ９ ｍｇ／ｇ，ＲＳＤ为４．７ ９／６，澳洲茄边碱 的平均含量为０．０８５ ６ ｍｇ／ｇ，ＲＳＤ为４．１ 。 ２．３．８稳定性试验 精密吸取上清液５Ｏ ｍＬ，水浴蒸干，残渣加５ ｍＬ水 溶解，通过Ｄ１０１大孔吸附树脂柱（１０ ｇ，５００ ｍｍ× ２Ｏ ｒａｍ），静置１ ｈ，以水５Ｏ ｍＬ洗脱，弃去水液，再用 １５ 乙醇５Ｏ ｍＬ洗脱，弃去洗脱液，继用７５ 乙醇 ５０ ｍＬ洗脱，收集洗脱液，蒸干，残渣用甲醇溶解并 转移至５ ｍＬ量瓶中，加甲醇至刻度，摇匀，滤过，取 续滤液，即得。 取同一份供试品溶液，分别在０、２、４、６、８ ｈ进 样，依法测定，澳洲茄碱峰面积的ＲＳＤ为４．２ ，澳 洲茄边碱峰面积的ＲＳＤ为２．４ ，说明供试品溶液 中澳洲茄碱和澳洲茄边碱在８ ｈ内稳定。 ２．３．９回收率试验 称取５号龙葵药材粉末６份，每份３．０ ｇ，精密 称定，分别精确加入含澳洲茄碱０．２１２ ｍｇ／ｍＬ和澳 ２．３．４线性关系考察 精密吸取“２．３．２”项下对照品溶液２．０、５．０、 １０．０、１５．０、２０．０、２５．０、３０．０ Ｌ注入液相色谱仪， 测定峰面积。分别以澳洲茄碱和澳洲茄边碱量的对 数为横坐标，峰面积的对数为纵坐标，绘制标准曲 线，澳洲茄碱回归方程为：Ｙ一１．２９Ｘ＋８．６６（ｒ一 ０．９９８ ８），澳洲茄边碱回归方程为：Ｙ一１．４１Ｘ＋ 洲茄边碱０．２５８ ｍｇ／ｍＬ的对照品溶液１ ｍＬ，按“２． ３．３”项下的方法操作，依法测定，澳洲茄碱的平均回 收率为９Ｏ．３４ ，ＲＳＤ为４．８３ ，澳洲茄边碱的平 均回收率为９１．５Ｏ ，ＲＳＤ为４．６７ 。 ２．３．１０样品含量测定 采集的１０批龙葵药材，按“２．３．３”项下的方法 操作，制备供试品溶液，分别吸取供试品溶液各１０ ５．６３（ｒ一０．９９９ ４），结果表明，澳洲茄碱在０．７５２～ １１．２８ ｇ和澳洲茄边碱在０．７００￣１０．５０ ｇ范围内 线性关系良好。 Ｌ，注入液相色谱仪，依法测定，测定结果见表２。 ３讨论 ３．１薄层鉴别用样品制备方法的优化 样品提取后直接点样，２种生物碱斑点不明显， 有明显干扰。单独经过大孔树脂或中性氧化铝处理 ２．３．５检测限及定量限的考察 将对照品混合溶液进行稀释并进行分析，当信 噪比为１０时，测得澳洲茄碱和澳洲茄边碱的定量 限，分别为３８１．０ ｎｇ和３２８．８ ｎｇ，当信噪比为３时， 测得澳洲茄碱和澳洲茄边碱的检测限，分别为６３．５ ｎｇ和５４．８ ｎｇ。 斑点仍有干扰，同时经大孑Ｌ树脂与中性氧化铝处理 后所得供试品溶液２种生物碱的斑点清晰、圆整，干 扰少。 ３．２含量测定条件的优化 ３．２．１ ＵＶ检测器与ＥＬＳＤ检测器的选择 澳洲茄碱与澳洲茄边碱为末端吸收（１９５ ｎｍ）， ２．３．６精密度试验 取“２．３．２”项下混合对照品溶液，重复进样６ 张彦华，等：龙葵药材的质量评价研究第４期 一３７７一 受流动相影响较大，基线不够理想。比较了ＵＶ 当采用ＥＬＳＤ检测器时，基线平稳，干扰峰较少，因 （１９５ ｎｍ）检测器及ＥＬＳＤ检测器对龙葵中澳洲茄 此确定采用ＥＬＳＤ检测器。 碱与澳洲茄边碱测定色谱行为的影响。结果显示， 。 。 一量一含一分一水一 趴 ＆ ＆ ∞ ¨ ３．２．２流动相的选择 参考文献： 有文献报道测定澳洲茄碱和澳洲茄边碱含量采 ［１］国家药典委员会．中华人民共和国药典：一部Ｉｓ］．北京：人民卫 用磷酸氢二钠或磷酸氢二钾调节流动相的ｐＨ 生出版社，Ｉ９７８：１５４． 值＿７］，若采用ＥＬＳＤ检测器，不能采用挥发性较差 Ｃｈｉｎｅｓｅ ｐｈａｒｍａｃｏｐｏｅｉａ ｃｏｍｍｉｓｓｉｏｎ．Ｐｈａｒｍａｃｏｐｏｅｉａ ｏｆ ｐｅｏｐｌｅ Ｓ ｒｅｐｕｂｌｉｃ ｏｆ Ｃｈｉｎａ［Ｓ］．Ｂｅｉｊｉｎｇ：Ｐｅｏｐｌｅ Ｓ ｍｅｄｉｃａｌ ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ 的酸氢二钠或磷酸氢二钾，故选择挥发性较强的三 ｈｏｕｓｅ，１９７８：１５４． 乙胺。乙腈较甲醇出峰时间早且分离效果好，故选 ［２］Ｓｏｎ ＹＯ，Ｋｉｍ Ｊ，Ｌｉａｒ ｊｃ，ｅｔ ａ１．Ｒｉｐｅ ｆｒｕｉｔｓ ｏｆ Ｓｏｌａｎｕｍ ｎｉｇｒｕｍ 择乙腈一三乙胺一水为流动相。 Ｌ．ｉｎｈｉｂｉｔ ｃｅｌｌ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｉｎｄｕｃｅｓ ａｐｏｐｔｏｓｉｓ ｉｎ ＭＣＦ一７ ｃｅｌｌ［Ｊ］． ３．２．３供试品溶液制备方法的优化 Ｆｏｏｄ Ｃｈｅｍ Ｔｏｘｉｃｏｌ，２００３，４１（１０）：１４２１—１４２８． 比较了超声提取与回流提取２种提取方法，以 ［３］谢启梅，谢军荣．龙葵在肿瘤治疗中的运用［Ｊ］．江西中医药， １９９６，２７（２）：５２－５３． 澳洲茄碱和澳洲茄边碱测定量为指标，超声提取与 Ｘｉｅ ＱＭ，Ｘｉｅ ＪＲ．Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｓｏｌａｎｕｍ ｎｉｇｒｕｒｎ ｉｎ ｔｒｅａｔｉｎｇ 回流提取无显著差异，选择超声提取；比较了２５ 、 ｔｕｍｏｒ［Ｊ］．Ｊｉａｎｇｘｉ Ｊ Ｔｒａｄｉｔ Ｃｈｉｎ Ｍｅｄ，１９９６，２７（２）：５２—５３． ５０ 、７５ 甲醇３种提取溶媒的提取效果，显示 ［４］赵晓琴，曾祥法．龙葵片对原发性肝癌治疗作用的ｌ临床研究［Ｊ］． ７５ ９，６甲醇提取澳洲茄碱和澳洲茄边碱含量最高；比 辽宁中医杂志，２００２，１１（２９）：６７１—６７２． 较了龙葵药材甲醇提取直接进样和提取后再经 Ｚｈａｏ ＸＱ，Ｚｅｎｇ ＸＦ．Ｃｌｉｎｉｃａｌ ｓｔｕｄｙ ｏｎ ｔｈｅ ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃａｌ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ Ｓｏｌａｎｕｍ ｎｉｇｒｕｍ ｏｎ ｐｒｉｍａｒｙ ｌｉｖｅｒ ｃａｎｃｅｒ［Ｊ］．Ｌｉａｏｎｉｎｇ Ｊ Ｔｒａｄｉｔ Ｄ１０１大孔吸附树脂去杂２种方法，发现不经大孔吸 Ｃｈｉｎ Ｍｅｄ，２００２，１１（２９）：６７１—６７２． 附树脂去杂，液相色谱图中澳洲茄碱和澳洲茄边碱 ［５］潘伟光，刘宗潮，潘启超，等．中药复方龙葵合剂在动物体内外的 峰附近有干扰，且基线不平稳；进而比较了大孔树脂 抗癌药效［Ｊ］．癌症，１９９６，１５（６）：４３８—４４０． 上样浸泡时间、洗脱溶剂及用量，最终确定了供试品 Ｐａｎ ＷＧ，Ｌｉｕ ＺＨ，Ｐａｎ ＱＣ，ｅｔ ａ１．Ｓｔｕｄｙ ｏｎ ｔｈｅ ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ ｅｆｆｅｃｔ 溶液的制备方法。 ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ ｈｅｒｂａｌ ｃｏｍｐｏｕｎｄ—Ｓｏｌａｎｕｍ ｎｉｇｒｕｍ Ｍｉｘｔｕｒｅ ｉｎ ｖｉｔｒｏ ３．３结论 ａｎｄ ｉｎ ｖｉｖｏＩ－Ｊ］．Ｃｈｉｎ Ｊ Ｃａｎｃｅｒ，１９９６。１５（６）：４３８—４４０ ［６］刘为为，刘延庆，戴小军．龙葵抗肿瘤作用的研究进展［Ｊ］．中药 研究表明市售各批药材中澳洲茄碱和澳洲茄边 材，２００９，３２（３）：４６２—４６５． 碱的含量差异较大，这可能与生物遗传因素和生态 Ｌｉｕ ＷＷ，Ｌｉｕ ＹＱ，Ｄａｉ ＸＪ．Ｔｈｅ ｐｒｏｇｒｅｓｓ ｓｔｕｄｙ ｏｎ ｔｈｅ ａｎｔｉｃａｎ— 环境影响所致的次生代谢产物的合成和积累不同有 ｃｅｒ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ Ｓｏｌａｎｕｍ ｎｉｇｒｕｍ［Ｊ］．Ｊ Ｃｈｉｎ Ｍｅｄ Ｍａｔｅｒ，２００９，３２ 关，其含量差异与生物效应变化的相关性需要进一 （３）：４６２－４６５． 步深入研究以阐明。市场流通的龙葵药材亟待要求 ［７］李明慧，丁岗，孟兆青，等．龙葵药材中澳洲茄碱、澳洲茄边碱的 含量测定［Ｊ］．中国天然药物，２００７，５（５）：３６０—３６２． 规范统一，如统一栽培、采收等，需引起相关方面的 Ｌｉ ＭＨ，Ｄｉｎｇ Ｇ，Ｍｅｎｇ ＺＱ，ｅｔ ａ１．Ｃｏｎｔｅｎｔ ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ Ｓｏ— 重视，以保证龙葵药材的质量及临床疗效，因此建立 ｌａｓｏｎｉｎｅ ａｎｄ Ｓｏｌａｍａｒｇｉｎｅ ｉｎ Ｓｏｌａｎｕｒｎ ｎｉｇｒｕｍ［Ｊ］．Ｃｈｉｎ Ｊ Ｎａｔ 龙葵药材的质量标准具有重要意义。 （编辑：李伟东）